ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ  JUGNALIS REGIA EFFIGIA

Ельвира Шаденова; Мариям  Кайгермазова; Медет  Сембеков; Умит  Ошакбай; Эрика  Джангалина

doi:10.37884/2-2023/33

Аннотация

Источниками фитопрепаратов являются лекарственные растения, которые ценятся во всем мире, и которые могут исчезнуть в эпоху изменения климата. Одним из таких источников является грецкий орех. Грецкий орех входит в род Juglans семейства Juglandaceae. Цель исследования состоит, в том, чтобы изучить действие различных концентрации стимуляторов роста на различные виды эксплант Juglans regia effigia с использованием технологии микроклонального размножения, где в качестве материнского растения брали взрослые деревья. Данное исследование рассчитана на получение дополнительного лекарственного источника сырья в виде каллусных или суспензионных культур. Наилучшие результаты были достигнуты при инициации эксплантов на культуральной среде DKW с использованием 1 и 10 мг/л БАП, ТDZ 5 и 10 мг/л. По истечению 20 дней среднее количество образованных побегов составляло 2-5штук на один каллус, высота побега 1,6-2,7 см.

микроклональное размножение каллус каллусогенез эксплант in vitro грецкий орех культура ткани

01 Введение

Полный текст статьи доступен для скачивания в формате PDF на панели справа.

02 Список литературы

1. Буркова Е.А., Канарский А.В., Канарская З.А. (2014). Перспектива применения фитобиотехнологии для получения биологически активных веществ //Вестник Казанского технологического университета, 2014. -Т.14. – С.352–356;
2. Mulabagal V., Tsay H-S. Plant cell cultures -an alternative and efficient source for the production of biologically important secondary metabolites //Int.Journal Applied Science Engineering, 2004. – V.2. - №1. – Р.29-48.
3. Trandafir I., Cosmulescu S., Botu M., Nour V. Antioxidant activity, and phenolic and mineral contents of the walnut kernel (Juglans regia L.) as a function of the pellicle color //Fruits, 2016. -V. 71. – Р.173–184. doi:10.1051/fruits/2016006.115
4. Hojatollah Kavosi Ali Khadivi. The selection of superior late-leafing genotypes of Persian walnut (Juglans regia L.) among seedling originated trees based on pomological characterizations //Scientia Horticulturae, 2021. - V.28. -P. 110-299. DOI: 10.1016/j.scienta.2021.110299.
5. Olimpia A. Iordănescu, Isidora Radulov, Ioana P. Buhan et al. Physical, Nutritional and Functional Properties of Walnuts Genotypes (Juglans regia L.) from Romania //Agronomy, 2021. -V.11. -P.1092. https://doi.org/10.3390/agronomy11061092.
6. Змушко А.А., Рундя А.П. Размножение грецкого ореха (juglans regia l.) in vitro //Плодоводство, 2015. - Т. 27. – С.404-410.
7. Ricardo Julian Licea-Moreno, Alexandru Fira, Georgi Chocov. Micropropagation of valuable walnut genotypes for timber production: new advances and insights //Annals of Silvicultural Research, 2020. 44 (1). -P.5-13. DOI: http://dx.doi.org/10.12899/asr-1932.
8. Кушнаренко С.В., Ромаданова Н.В., Турдиев Т.Т., Аралбаева М.М., Қалыбаев Қ.Р. Сохранение в криобанке образцов грецкого ореха из нескольких популяций сайрам-угамского государственного национального природного парка //Вестник КазНУ. Серия экологическая. -№2. -Т.71. - С.72-80. https://doi.org/10.26577/EJE.2022.v71.i2.07.
9. Kepeneka, K. and Kolağasib, Z. 2016. Micropropagation of walnut (Juglans regia L.). Acta Physica Polonica, Vol. 130, No. 1, 150 – 156.
10. López, J.M. Field behavior of self-rooted walnut trees of different cultivars produced by tissue culture and planted in Murcia (Spain) //Acta Hort., 2001.- 544. -P. 543–546.
11. Manjkhola, S., U. Dhar, and M. Joshi. Organogenesis, embryogenesis and synthetic seed production in Arnebia euchroma an critically endangered medicinal plant of the Himalaya //In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 2005. -V.41. – P.244-248.
12. Bandyopadhyay S., Cane K., Rasmussen G., and Hamill J. Efficient plant regeneration from seedling explants of two commercially important temperate eucalypt species–Eucalyptus nitens and E. Globulus //Plant Sci., 2005. – 140. – P.189-198.
13. Xiao-Dong CAI, Gui-Yuan WANG, Wen-Juan CAO. In vitro Induction and Proliferation of Callus from Immature Cotyledons and Embryos of Juglans regia cv. ‘Xiangling’ //NotBotHorti Agrobo, 2013. - 41(2). -P.378-384.
14. Fatima, A., Kamili A.N., and Shah A.M. Plantlet regeneration from excised embryonal axes, shoot apices and nodal segments of Juglans regia L. //Acta Hort., 2006 (ISHS)-705. -P.387-392.
15. Hasey et al., Hasey, J.K., Westerdahl, B.B., Micke, W.C., Ramos, D.E. &Yeater, J.T. Yield performance of own-rooted “Chandler” walnut versus “Chandler” walnut on Paradox Rootstock //Acta Hort., 2001. -P. 489–493.
16. Fernández H., Pérez C., and Sánchez-Tamés R. Modulation of the morphogenic potential of the embryonic axis of Juglans regia by cultural conditions //Plant Growth Regul.,2000. -V. 30. -P.125-131.
17. Vahdati K., Jariteh M., Niknam V., Mirmasoumi M., and Ebrahimzadeh H. Somatic embryogenesis and embryo maturation in Persian walnut //Acta Hort., 2006.- 705. -P.199-205.

Ссылки для цитирования

[1]2023. ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister natigeler. 2 (98) (Jun. 2023), 336–344. DOI:https://doi.org/10.37884/2-2023/33.

(1)ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister natigeler 2023, No. 2 (98), 336-344. https://doi.org/10.37884/2-2023/33.

ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. (2023). Izdenister Natigeler, 2 (98), 336-344. https://doi.org/10.37884/2-2023/33

ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister natigeler, [S. l.], n. 2 (98), p. 336–344, 2023. DOI: 10.37884/2-2023/33. Disponível em: https://natsus.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/274. Acesso em: 15 sep. 2026.

“ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA”. 2023. Izdenister Natigeler, no. 2 (98) (June): 336-44. https://doi.org/10.37884/2-2023/33.

“ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA” (2023) Izdenister natigeler, (2 (98), pp. 336–344. doi:10.37884/2-2023/33.

[1]“ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA”, Izdenister natigeler, no. 2 (98), pp. 336–344, Jun. 2023, doi: 10.37884/2-2023/33.

“ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA”. Izdenister Natigeler, no. 2 (98), June 2023, pp. 336-44, https://doi.org/10.37884/2-2023/33.

“ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA”. Izdenister natigeler, no. 2 (98) (June 29, 2023): 336–344. Accessed September 15, 2026. https://natsus.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/274.

1.ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister natigeler [Internet]. 2023 Jun. 29 [cited 2026 Sep. 15];(2 (98):336-44. Available from: https://natsus.kaznaru.edu.kz/index.php/research/article/view/274

1.ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ СТИМУЛЯТОРОВ НА КАЛЛУСОГЕНЕЗ JUGNALIS REGIA EFFIGIA. Izdenister natigeler. 2023;(2 (98):336-344. doi:10.37884/2-2023/33

[1] 1. Буркова Е.А., Канарский А.В., Канарская З.А. (2014). Перспектива применения фитобиотехнологии для получения биологически активных веществ //Вестник Казанского технологического университета, 2014. -Т.14. – С.352–356;

[2] 2. Mulabagal V., Tsay H-S. Plant cell cultures -an alternative and efficient source for the production of biologically important secondary metabolites //Int.Journal Applied Science Engineering, 2004. – V.2. - №1. – Р.29-48.

[3] 3. Trandafir I., Cosmulescu S., Botu M., Nour V. Antioxidant activity, and phenolic and mineral contents of the walnut kernel (Juglans regia L.) as a function of the pellicle color //Fruits, 2016. -V. 71. – Р.173–184. doi:10.1051/fruits/2016006.115

[4] 4. Hojatollah Kavosi Ali Khadivi. The selection of superior late-leafing genotypes of Persian walnut (Juglans regia L.) among seedling originated trees based on pomological characterizations //Scientia Horticulturae, 2021. - V.28. -P. 110-299. DOI: 10.1016/j.scienta.2021.110299.

[5] 5. Olimpia A. Iordănescu, Isidora Radulov, Ioana P. Buhan et al. Physical, Nutritional and Functional Properties of Walnuts Genotypes (Juglans regia L.) from Romania //Agronomy, 2021. -V.11. -P.1092. https://doi.org/10.3390/agronomy11061092.

[6] 6. Змушко А.А., Рундя А.П. Размножение грецкого ореха (juglans regia l.) in vitro //Плодоводство, 2015. - Т. 27. – С.404-410.

[7] 7. Ricardo Julian Licea-Moreno, Alexandru Fira, Georgi Chocov. Micropropagation of valuable walnut genotypes for timber production: new advances and insights //Annals of Silvicultural Research, 2020. 44 (1). -P.5-13. DOI: http://dx.doi.org/10.12899/asr-1932.

[8] 8. Кушнаренко С.В., Ромаданова Н.В., Турдиев Т.Т., Аралбаева М.М., Қалыбаев Қ.Р. Сохранение в криобанке образцов грецкого ореха из нескольких популяций сайрам-угамского государственного национального природного парка //Вестник КазНУ. Серия экологическая. -№2. -Т.71. - С.72-80. https://doi.org/10.26577/EJE.2022.v71.i2.07.

[9] 9. Kepeneka, K. and Kolağasib, Z. 2016. Micropropagation of walnut (Juglans regia L.). Acta Physica Polonica, Vol. 130, No. 1, 150 – 156.

[10] 10. López, J.M. Field behavior of self-rooted walnut trees of different cultivars produced by tissue culture and planted in Murcia (Spain) //Acta Hort., 2001.- 544. -P. 543–546.

[11] 11. Manjkhola, S., U. Dhar, and M. Joshi. Organogenesis, embryogenesis and synthetic seed production in Arnebia euchroma an critically endangered medicinal plant of the Himalaya //In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 2005. -V.41. – P.244-248.

[12] 12. Bandyopadhyay S., Cane K., Rasmussen G., and Hamill J. Efficient plant regeneration from seedling explants of two commercially important temperate eucalypt species–Eucalyptus nitens and E. Globulus //Plant Sci., 2005. – 140. – P.189-198.

[13] 13. Xiao-Dong CAI, Gui-Yuan WANG, Wen-Juan CAO. In vitro Induction and Proliferation of Callus from Immature Cotyledons and Embryos of Juglans regia cv. ‘Xiangling’ //NotBotHorti Agrobo, 2013. - 41(2). -P.378-384.

[14] 14. Fatima, A., Kamili A.N., and Shah A.M. Plantlet regeneration from excised embryonal axes, shoot apices and nodal segments of Juglans regia L. //Acta Hort., 2006 (ISHS)-705. -P.387-392.

[15] 15. Hasey et al., Hasey, J.K., Westerdahl, B.B., Micke, W.C., Ramos, D.E. &Yeater, J.T. Yield performance of own-rooted “Chandler” walnut versus “Chandler” walnut on Paradox Rootstock //Acta Hort., 2001. -P. 489–493.

[16] 16. Fernández H., Pérez C., and Sánchez-Tamés R. Modulation of the morphogenic potential of the embryonic axis of Juglans regia by cultural conditions //Plant Growth Regul.,2000. -V. 30. -P.125-131.

[17] 17. Vahdati K., Jariteh M., Niknam V., Mirmasoumi M., and Ebrahimzadeh H. Somatic embryogenesis and embryo maturation in Persian walnut //Acta Hort., 2006.- 705. -P.199-205.